Содержание

Анализ на аэробные и факультативно анаэробные микроорганизмы

Список анализов

Посев на аэробные и факультативно-анаэробные бактерии с определением чувствительности к антибиотикам

Стоимость: 710 р.

Cрок исполнения: 2 — 5 дней
указанный срок не включает день взятия биоматериала

Материал для исследования: Моча

Метод исследования: Культивирование бактерий на питательных средах для выделения культур микроорганизмов, их идентификация и определение чувствительности к антибактериальным препаратам.

Общие сведения

Исследование мочи на обнаружение аэробных и факультативно-анаэробных бактерий представляет собой количественную методику определения этиологически значимых возбудителей при инфекциях мочевых путей (ИМП) и охватывает широкий круг состояний — от бессимптомной бактеурии, с одной стороны, до острого пиелонефрита и септицемии, с другой — объединенных на основании одного общего признака: положительного результата бактериологического исследования мочи. При обнаружении возбудителей инфекций мочевых путей (первой и второй групп приоретентности) определяется титр возбудителя и чувствительность его к антибактериальным препаратам, с использованием комерческих импортных питательных сред, тест-систем на автоматическом бактериологическом анализаторе Vitek2compact.

Исследование мочи на обнаружение аэробных и факультативно-анаэробных бактерий представляет собой количественную методику определения этиологически значимых возбудителей при инфекциях мочевых путей (ИМП) и охватывает широкий круг состояний — от бессимптомной бактеурии, с одной стороны, до острого пиелонефрита и септицемии, с другой — объединенных на основании одного общего признака :положительного результата бактериологического исследования мочи. При обнаружении возбудителей инфекций мочевых путей (первой и второй групп приоретентности) определяется титр возбудителя и чувствительность его к антибактериальным препаратам ,с использованием комерческих импортных питательных сред, тест-систем на автоматическом бактериологическом анализаторе Vitek 2 compact .

Показания к исследованию

• Неосложненные инфекции мочевых путей (МП)
• Неосложненные ИМП включают в себя эпизоды острого цистита и острого пиелонефрита у практически здоровых людей
• Острый неосложненный цистит у женщин
• Острый неосложненный пиелонефрит у женщин
• Рецидивирующие ИМП у женщин
• Бессимптомная бактериурия
• Острый неосложненный пиелонефрит у молодых людей (15-50 лет)
Осложненные инфекции мочевых путей (МП):
1. Наличие постоянного катетера, стента или фиксатора, или периодические катетеризация мочевого пузыря.
2. Объем остаточной мочи >100 мл.
3. Обструктивная уропатия любой этиологии, в том числе нейрогенный мочевой пузырь.
4. Камни и опухоли.
5. Пузырно-мочеточниковый рефлюкс.
6. Поражения уроэпителия любой этиологии (химические, лучевые).
7. Пери- и послеопреционные ИМП.
8. Почечная недостаточность и трансплантация почек.
9. Сахарный диабет и иммунодефициты.

Подготовка к исследованию

Женщина должна выполнить следующие действия:
1. Тщательно вымыть руки с мылом и вытереть их чистым полотенцем.
2. Раздеться и тщательно вымыть наружные половые органы, используя для этих целей марлевый тампон и теплую мыльную воду. Моют область наружних половых органов, перемещая тампон спереди назад по направлению от лобка к заднему проходу, стараясь проникнуть во все складки.
3. Тщательно ополаскивают промежность теплой водой и высушивают стерильным марлевым тампоном. Во время этой процедуры большие половые губы должны быть разведены, к вымытым частям тела запрещается прикасаться руками.
4. Начинают мочеиспускание; первую порцию мочи не берут, среднюю порцию собирают в стерильную емкость (СК100) (примерно 1/3 баночки) и закрывают ее стерильной крышкой.
5. Контейнер маркируют и немедленно доставляют в лабораторию. Допускается хранение при температуре 4 о С не более 24 ч.
6. Для исследования лучше собирать утреннюю мочу или с интервалом 4 часа после последнего мочеиспускания.
7. Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не рекомендуется, так как она может привести к инфицированию мочевых путей. Катетером моча берется только в случаях, когда катетеризация проводится по соображениям урологического диагностического исследования. При взятии мочи прямым катетером проводится тщательный туалет области уретры. Асептически в мочевой пузырь вводится катетер, дают стечь 15 мл. мочи и затем собирают мочу в стерильный контейнер для исследования (СК100).
8. Для диагностики воспалительного процесса в почках моча собирается катетером из правой и левой почки и мочеточников в кол-ве 0,5 – 1,0 мл. в стерильный контейнер (СК100).

Мужчины доджны выполнить следующие действия:
1. Тщательно вымыть руки с мылом и вытереть их чистым полотенцем.
2. Раздеться и тщательно вымыть наружные половые органы, используя для этих целей марлевый тампон и теплую мыльную воду. Высушивают стерильным марлевым тампоном.
3. Оттянуть назад крайнюю плоть и выпустить небольшое количество мочи.
4. Среднюю порцию собирают в стерильную емкость (СК 100) (примерно 1/3 баночки) и закрывают ее стерильной крышкой.
5. Контейнер маркируют и немедленно доставляют в лабораторию. Допускается хранение при температуре 4 о С не более 24 ч.
6. Для исследования лучше собирать утреннюю мочу или с интервалом 4 часа после последнего мочеиспускания.
7. Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не рекомендуется, так как она может привести к инфицированию мочевых путей.
Катетером моча берется только в случаях, когда катетеризация проводится по соображениям урологического диагностического исследования.
При взятии мочи прямым катетером проводится тщательный туалет области уретры. Асептически в мочевой пузырь вводится катетер, дают стечь 15 мл. мочи и затем собирают мочу в стерильный контейнер (СК100) для исследования.
8. Для диагностики воспалительного процесса в почках моча собирается катетером из правой и левой почки и мочеточников в количестве 0,5 – 1,0 мл. в стерильный контейнер (СК100).
9. При простатитах проводят сбор трех порций мочи: первая и средняя — при самопроизвольном мочеиспускании, третья — через 5 – 10 мин. после массажа предстательной железы в стерильный контейнер каждая (СК100).

Факторы, влияющие на результат исследования

Нарушение правил взятия биоматериала на первом этапе исследования (преаналитический этап) может привести к контаминации материала (мочи) и получению не правильных результатов, и в связи с этим потребуется повторное исследование.

Бактериологическое исследование на анаэробные бактерии и чувствительность к антибиотикам

Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции. Принципы забора материала на исследование. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам. Выделение чистой культуры анаэробной бактерии. Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам.

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http: //www. allbest. ru/

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Кемеровская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Бактериологическое исследование на анаэробные бактерии и чувствительность к антибиотикам

студент 2 курса

Науменко Николай Петрович

1. Бактериологическое исследование

1.1 Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции

1.2 Принципы забора материала на исследование

1.3 Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии

2. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам

2.1 Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам

1. Бактериологическое исследование

  • бактериологический анаэробный инфекция антибиотик

Бактериологическое исследование — совокупность методов, применяемых для обнаружения и установления природы бактерий, выделенных от больных, бактерионосителей или из объектов окружающей среды. Б. и. проводят с диагностической целью при инф. болезнях, а также при обследовании на бактерионосительство и определении сан.-гиг. состояния объектов окружающей среды.

Для бактериологического исследования определяется целью исследования, биологическими свойствами микробов, условиями обитания их в исследуемом объекте, патогенезом заболевания (с учетом места наибольшей концентрации возбудителя и путей его выведения из организма).

Так, при сепсисе или болезни, сопровождающейся бактериемией (напр., прибрюшном тифе), для обнаружения возбудителя берут кровь, при дизентерии — испражнения, при пневмонии — мокроту, при подозрении на анаэробную инфекцию — материал из глубоких слоев тканей и т. д. Успех бактериологического исследования в значительной степени зависит от правильности взятия материала и соблюдения определенной осторожности при его транспортировке. У больного материал для исследования рекомендуется брать до начала лечения химиотерапевтическими препаратами!

1.1 Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции

Анаэробные микроорганизмы, являясь представителями нормальной микрофлоры, в то же время они имеют потенциальные способности для развития инфекционного процесса практически в любом органе. Вследствие разных причин, например, при длительной терапии иммунодепрессантами, антибиотиками, а также в результате травмы, хирургического вмешательства, эти микроорганизмы попадают в кровяное русло, брюшную полость, различные органы и ткани и становятся причиной тяжелых гнойно-воспалительных процессов, сопровождающихся высокой смертностью, особенно при анаэробном сепсисе.

Важную роль анаэробы играют при развитии осложнений после хирургических вмешательств. В амбулаторной практике анаэробные инфекции с большой частотой встречаются у стоматологических, гинекологических больных, у женщин с отягощенным акушерским анамнезом.

Анаэробы являются участниками гнойно- воспалительных процессов, возникающих во всех отделах генитального тракта женщин. Их выделяют как единственного возбудителя или в составе ассоциации с аэробами при таких распространенных заболеваниях, как вагинит, вагиноз, послеродовый эндометрит. Установлена этиологическая роль анаэробов при возникновении воспалительных заболеваний придатков матки и околоматочного пространства, которые часто являются следствием абортов, инструментальных диагностических мероприятий, применения внутриматочных спиралей, хирургических вмешательств. Анаэробы также играют важную роль при возникновении пародонтоза — воспалительного процесса в тканях, прилегающих к зубам. По данным ВОЗ, около 95% взрослого населения планеты и 80% детей имеют признаки пародонтоза. Воспалительный процесс в тканях десны изначально возникает из-за массивных микробных скоплений и выделяемых ими ферментов и токсинов.

Бактериологическая диагностика при подозрении на анаэробную инфекцию весьма актуальна поскольку позволяет назначить наиболее эффективное лечение.

1.2 Принципы забора материала на исследование

Материал для исследования следует брать по возможности до начала химиотерапии и лучше во время вскрытия или дренирования гнойного очага.

Особенно актуально проведение бактериологического анализа при неэффективности антимикробной терапии и при неблагоприятном течении заболевания и возникновении осложнений.

Отбор проб клинического материала при подозрении на анаэробную инфекцию и транспортировка этих образцов в бактериологическую лабораторию имеет ряд трудностей, связанных с необходимостью избежать агрессивного действия кислорода воздуха на строгие анаэробы.

Так как анаэробы являются представителями нормальной микрофлоры человека, материал для исследования следует брать с соблюдением правил асептики и строго с места локализации очага, чтобы исключить загрязнение посторонней микрофлорой.

Оптимальным способом получения проб материала является его аспирация с помощью шприца. Материал, забранный в шприц, должен быть доставлен в лабораторию для исследования в максимально короткий срок. Транспортные среды позволяют сохранить жизнеспособность анаэробных бактерий в течение достаточно продолжительного срока, указанного в инструкции.

Исследование клинического материала на анаэробы включает в себя все этапы культурального исследования, принятого в бактериологии, в том числе: выделение анаэробных микроорганизмов на искусственных питательных средах, изучение их свойств и идентификацию. Однако, учитывая физиологические особенности этой обширной группы микроорганизмов и их высокие питательные потребности, культивирование этих микробных патогенов представляется сложным и недоступным для большинства бактериологических лабораторий.

В лабораториях клинической микробиологии проводятся исследования на анаэробную инфекцию с использованием специального оборудования , импортных питательных сред и тест-систем для идентификации изучаемых микроорганизмов до рода и вида.

1.3 Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии

Выращивание чистой культуры анаэробов производят путем посева материала из изолированной колонии на среду Китта-Тароцци, в составе мясной бульон, глюкоза и кусочки печени или фарша. Для предотвращения доступа кислорода среда покрыта слоем вазелинового масла.

Метод Цейсслера-исследуемый материал рассевают штрихами по поверхности плотной питательной среды, помещают в анаэростат и выдерживают в термостате при 37°С в течение 24-72 часов.

Метод Вейнберга- несколько капель исследуемого материала вносят в пробирку с 4-5 мл изотонического раствора хлористого натрия, перемешивают запаянным капилляром и переносят в пробирку с расплавленным и охлажденным до 45-50°С сахарным агаром, разлитым высоким столбиком. После перемешивания этим же капилляром последовательно засевают еще две пробирки с сахарным агаром и быстро охлаждают. Пробирки инкубируют в обычном термостате. Метод Виньяля-Вейона.

2. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам

Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам и химиопрепаратам — это свойство микроорганизмов реагировать на действие данных препаратов приостановкой размножения или гибелью. Каждый вид или близкая группа видов имеют характерный спектр и уровень природной чувствительности по отношению к определенному препарату или группе препаратов.

Для чего нужна чувствительность к антибиотикам?

Для успешного проведения лечения антибиотиками, особенно в случаях хронической инфекции, необходимо предварительно определить степень чувствительности к антибиотикам микробов, вызвавших заболевание.

Мерой чувствительности микробов является минимальная концентрация препарата (мкг/мл), которая подавляет рост микробов на питательных средах в стандартных условиях постановки опыта. Выделяют 3 категории чувствительности-устойчивости микробов:

а) чувствительные подавляются при назначении обычных доз антибиотиков;

б) умеренно-устойчивые штаммы микробов подавляются при введении максимальных доз препарата;

в) устойчивые штаммы микробов не подавляются при введении в организм человека максимально допустимых доз.

2.1 Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам

Современные стандартизованные методы определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам подразделяют на две группы:

1. Диффузные методы:

2. Методы серийных разведений антибиотика в питательной среде:

-разведение препарата в жидкой питательной среде;

-разведение препарата в плотной питательной среде.

Несомненным достоинством диффузионных методов является простота тестирования и доступность выполнения в любой бактериологической лаборатории. Однако с учетом высокой стоимости Е-тестов для рутинной работы обычно используют диско-диффузионный метод.

Диффузные методы определения чувствительности основаны на диффузии антибактериальных препаратов из носителя в плотную питательную среду. Стандартизованную суспензию исследуемого микроорганизма, соответствующую стандарту мутности 0,5 по MсFarland, засевают «газоном» на питательную среду. На поверхность посева укладывают стандартные бумажные диски, пропитанные антибиотиками, концентрации которых соответствуют требованиям ВОЗ. Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста микроорганизмов вокруг дисков. После инкубирования посева в термостате оценивают чувствительность микроорганизма (рис. 5). Если исследуемый микроорганизм чувствителен к одному из препаратов, вокруг соответствующего диска образуется зона задержки роста, где концентрация антибиотика превосходит минимальную подавляющую концентрацию (МПК). Устойчивые к препарату культуры не образуют стерильных зон. Однако диффузный метод позволяет лишь косвенно судить о величине МПК, а результатом исследования является отнесение микроорганизма к одной из категорий чувствительности (устойчивый, малоустойчивый, чувствительный, высокочувствительный штамм).

Это модификация диско-диффузного метода, однако, пользуясь этим методом, можно определить МПК. Для реализации этого метода используют полоску Е-теста, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. Полоски помещают на поверхность засеянной питательной среды. Если бактерии чувствительны к действию препарата, вокруг участков полоски, содержащих его ингибирующие концентрации, образуется эллипсовидная зона задержки роста, в месте пересечения которой с полоской Е-теста получают значение МПК.

Методы серийных разведений

Основаны на прямом определении основного количественного показателя, характеризующего микробиологическую активность антибактериальных препаратов — величины его МПК. МПК — минимальная концентрация, подавляющая видимый рост исследуемого микроорганизма в бульонной культуре или на плотной питательной среде.

Метод серийных разведений в жидкой питательной среде

Антибиотик в различных концентрациях вносят в жидкую питательную среду (бульон). Затем бактериальную суспензию определенной плотности, соответствующую стандарту мутности 0,5 по MсFarland, помещают в бульон с антибиотиком. После инкубации при температуре 37 С проводят учет полученных результатов. Наличие роста микроорганизма в бульоне (помутнение бульона) свидетельствует о том, что данная концентрация антибиотика недостаточна, чтобы подавить его жизнеспособность. По мере увеличения концентрации антибиотика рост микроорганизма ухудшается. Первую наименьшую концентрацию антибиотика (из серии последовательных разведений), где визуально не определяется бактериальный рост принято считать минимальной концентрацией, подавляющая видимый рост исследуемого микроорганизма. Измеряется МПК в мг/л или мкг/мл (рис. 6). МПК — наименьшая концентрация антибиотика (мг/л или мкг/мл), которая in vitro полностью подавляет видимый рост бактерий

Метод серийных разведений в плотной питательной среде

Этот метод аналогичен методу серийных разведений в жидкой питательной среде, однако определение МПК требует более сложных манипуляций. Готовят двойные серийные разведения препарата от 1:10000 до 1:320000, затем вносят по 1 мл каждого разведения в пробирки, содержащие расплавленный и остуженный до 45 С агар. Затем содержимое пробирок быстро выливают в стерильные чашки Петри и после застывания питательной среды засевают исследуемый микроорганизм. После инкубации определяют МПК по отсутствию роста на чашках, содержащих наименьшие концентрации препарата.

1. Методичка по антибиотикам авторы : Нечаева О.В., Швиденко И.Г., Шуб Г.М.. Информация взята со страниц 59-65

2. Медицинская микробиология ,вирусология и иммунология — под редакцией академика РАММ А.А. Воробьева — Взята информация (Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии)

Гинекологический мазок на биоценоз — фемофлор 16 показателей

Биоценоз в гинекологии — это совокупность всех видов бактерий, живущих на слизистых оболочках женских половых органов (влагалище, матка, яичники, вульва). Больше всего представителей микрофлоры находится во влагалище. Мазок на биоценоз показывает состав микрофлоры, включающей полезные бактерии и патогенные микроорганизмы.

Зачем сдавать мазок на биоценоз

Стерильным влагалище женщины бывает лишь первые несколько часов жизни после появления на свет. Потом его начинают заселять различные микроорганизмы. Полезные бактерии образуют на слизистой защитную биоплёнку, препятствующую проникновению внутрь болезнетворных бактерий и поддерживающую местную иммунную систему для сохранения детородной функции. При нарушении количественного и качественного состава биофлоры, слизистую заселяют патогены, вызывающие гинекологические заболевания.

мазок на биоценоз

» data-medium-file=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?fit=450%2C291&ssl=1?v=1572898684″ data-large-file=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?fit=849%2C550&ssl=1?v=1572898684″ class=»aligncenter size-large wp-image-5202″ src=»https://i0.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz-849×550.jpg?resize=790%2C512″ alt=»мазок на биоценоз» width=»790″ height=»512″ srcset=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?w=849&ssl=1 849w, https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?w=450&ssl=1 450w, https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?w=768&ssl=1 768w, https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/mazok-na-biotsenoz.jpg?w=851&ssl=1 851w» sizes=»(max-width: 790px) 100vw, 790px» data-recalc-dims=»1″ />

В результате женщина чувствует боль, зуд, неприятный запах, развивается воспаление, приводящее к серьезным осложнениям, например, к бесплодию.

Симптомы заболеваний, вызванных смещением норм в составе флоры ( вагиноз, кольпит, молочница и т.д.), проявляются не сразу. Поэтому гинекологи берут мазок на биоценоз перед любой процедурой, чтобы не занести инфекцию, например, при лечении эрозии . Также необходимо сдать мазок при подозрении на бесплодие и другие гинекологические заболевания.

Что представляет собой биоценоз влагалища

Микрофлора есть у каждой женщины, но она непостоянна по своему составу, и меняется на протяжении жизни. Организм женщины населяют следующие группы микрофлоры:

Грамположительные облигатно-анаэробные

Пропионобактерии, лактобактерии, клостридии, молочнокислые лактобактерии, пептострептококки.

Грамположительные бактерии чаще других являются возбудителями заболеваний. Грамположительными их назвали за способность впитывать синий краситель в клеточную стенку и сохранять фиолетовую окраску при промывке спиртовым раствором по методу Грама. Обозначается такая флора Грам (+).

К патогенам человека относят как минимум 6 родов грамположительных микроорганизмов. Кокки — стрептококки, стафилококки — имеют шаровидную форму. Остальные — похожи на палочки. Они в свою очередь делятся на не образующие споры: Corynebacterium, Листерия и образующие споры: Бациллы, Клостридии.

Грамотрицательные облигатно-анаэробные бактерии

Фузобактерии, бактериоиды, порфиромонасы, превотеллы, порфиромонасы, вейлонеллы). Они не окрашиваются в синий цвет во время теста Грама, не образуют споры, но в некоторых случаях являются возбудителями заболеваний и выделяют опасные для жизни токсины. Грамотрицательные бактерии относят к условно-патогенной флоре, которая активизируется и становится опасной лишь при определенных условиях, например, при резком ослаблении иммунитета.

Заболевания, вызванные грамотрицательными бактериями, сложно лечить, потому что они, имея толстую оболочку, устойчивы к антибиотикам.

Факультативно-анаэробные

Микоплазмы, грибок Candida (молочница), стрептококки, стафилококки, энтеробактерии. Они прекрасно адаптируются, поэтому могут существовать как в бескислородной среде, так и в присутствии кислорода. Некоторые из них, например, кандида, также относится к условно-патогенным микроорганизмам.

грамположительные палочки в мазке

» data-medium-file=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/grampolozhitelnyie-palochki-v-mazke.jpg?fit=450%2C284&ssl=1?v=1572898684″ data-large-file=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/grampolozhitelnyie-palochki-v-mazke.jpg?fit=757%2C478&ssl=1?v=1572898684″ class=»aligncenter size-full wp-image-5204″ src=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/grampolozhitelnyie-palochki-v-mazke.jpg?resize=757%2C478″ alt=»грамположительные палочки в мазке» width=»757″ height=»478″ srcset=»https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/grampolozhitelnyie-palochki-v-mazke.jpg?w=757&ssl=1 757w, https://i2.wp.com/medcentr-diana-spb.ru/wp-content/uploads/2017/06/grampolozhitelnyie-palochki-v-mazke.jpg?w=450&ssl=1 450w» sizes=»(max-width: 757px) 100vw, 757px» data-recalc-dims=»1″ />

Лактобактерия — основная часть здоровой флоры

Важнейшая из всех бактерий — лактобактерия. Ее колонии составляют примерно 95% нормальной микрофлоры у здоровой женщины. Именно лактобактерия поддерживает высокий уровень противостояния биоценоза влагалища к инородным инфекциям.

Таким образом, нормальный биоценоз можно рассматривать как отсутствие грамотрицательных клеток и доминация лактобактерий. Количество анаэробных микроорганизмов к аэробным определяется пропорцией от 2:1 до 5:1.

Когда число лактобактерий уменьшается либо полностью исчезает, возникает бактериальный вагиноз. Это заболевание характеризуется преобладанием кокков, резким увеличением численности анаэробов.

Как меняется биоценоз на протяжении жизни женщины

Для определённого периода жизни женщины характерно доминирование той или иной группы микроорганизмов. У новорождённой малышки микроорганизмы во влагалище начинают появляться на второй день жизни. Полученные от матери гормоны эстрогены поддерживают кислую среду во влагалище. Его стенки выделяют гликоген — полисахарид, являющийся прекрасной средой для размножения молочнокислых бактерий (лактобактерий, бифидум бактерий).

Условно-патогенные микроорганизмы появляются после третьей недели жизни, потому что иммунитет, полученный от матери, постепенно ослабевает. Защитные свойства биоценоза девочки не отличаются стабильностью, поэтому важное значение играет девственная плева, не впускающая внутрь патогенную микрофлору.

В подростковом возрасте организм девушки сам вырабатывает эстрогены, поддерживающие оптимальную кислую среду во влагалище. Условно-патогенная микрофлора вымывается активно выделяющейся слизью. К 16 годам уже сформирован уникальный биоценоз, который сохраняется весь детородный период.

В возрасте от 16 до 45-50 лет (до наступления менопаузы) во влагалище здоровой женщины присутствует около 40 различных микроорганизмов, 95% которых относится к группе молочнокислых непатогенных, а 5% принадлежат к условно-патогенным.

В период менопаузы прекращается выработка женского гормона эстрогена, поддерживающего кислую среду влагалища. В этот период молочнокислые бактерии погибают, уступая место стафилококкам, кандидам, кишечным палочкам. Вот почему у пожилых женщин нередки случаи вагинита (воспаления стенок влагалища), молочница и дисбиоз.

Какой состав биофлоры влагалища считается нормальным

В норме в микрофлоре влагалища соотношение анаэробных к аэробным бактериям должно быть от 2:1 до 5:1. При воспалениях микрофлора меняется до показателей от 100:1 до 1000:1. Также в норме отсутствуют лейкоцитарные и эпителиальные клетки.

Нарушить нормальный биоценоз влагалища могут различные факторы:

  • ослабление иммунитета ввиду стрессов или болезней, переохлаждение;
  • гормональная перестройка (беременность, климакс, аборт, приём противозачаточных );
  • длительное лечение антибиотиками;
  • частая смена половых партнёров;
  • диарея, дисбактериоз, авитаминоз;
  • резкая смена климата;
  • мочеполовые инфекции;
  • синтетическое бельё, капроновые колготки (не пропускают воздух и создают условия для развития анаэробов), ежедневное использование прокладок.

Как понять, что биоценоз нарушен

Нарушение биоценоза встречается не только у взрослых женщин, но и у детей дошкольного возраста. В советское время все дети носили неэластичные колготки из хлопка, потому что другие изделия просто не продавались. Зато нарушение микрофлоры у девочки было редкостью

Сегодня все половозрелые женщины в той или иной степени испытали нарушение микрофлоры. Об отклонении биоценоза от нормы свидетельствуют следующие факты:

  • творожистые или гелеобразные выделения из влагалища;
  • неприятный резкий запах;
  • жжение при мочеиспускании, зуд во влагалище;
  • боли внизу живота как при менструации;
  • ощущение дискомфорта во время секса.

Какой анализ на биоценоз самый информативный: мазок фемофлор 16

Один из самых эффективных анализов на выявление картины влагалищного биоценоза — Фемофлор-скрининг. Это методика основана на методике полимеразной цепной реакции ПЦР . Это метод молекулярной биологии, позволяющий выделять ДНК того или иного вируса, грибка или бактерии. В результате врач получает картину состава микроорганизмов к— патогенных и полезных.

Самым популярным является мазок на микрофлору, известный как Фемофлор 16. Он помогает выявить 16 бактерий, обитающих на стенках влагалища, и разделить здоровый микробиот и патогенные микроорганизмы. Этот анализ представляет собой соскоб со слизистых стенок влагалища.

У несовершеннолетних детей до 16 лет производить забор материала для изучения можно только под наблюдением взрослого. Беременным женщинам при сроке беременности больше 22 недель мазок на биофлору не берут из-за высокой вероятности осложнений.

Когда проводится процедура?

Исследование биоценоза влагалища назначается в тех случаях, когда необходимо:

  • Определить состояние микрофлоры влагалища;
  • Подтвердить или опровергнуть наличие следующих заболеваний: бактериальный вагиноз, нормоценоз, вагинальная атрофия, вагинальный кандидоз, неспецифический вагинит, промежуточный нормоценоз.

Подготовка к взятию мазка

Подготовка к исследованию включает в себя те же этапы, которые проводятся при подготовке к любой другой гинекологической процедуре. Материал сдается для изучения примерно на 5-7 день менструального цикла. Во время месячных взятие мазка не проводится из-за изменения заселенности влагалища микробной флорой по причине выделений крови.

Перед процедурой забора мазка женщина должна исключить половые контакты за 2 дня до посещения врача, не спринцеваться, не пользоваться ежедневными прокладками, мазями и пр. Результат исследования будет признан правильным, если количество эпителия в мазке будет приблизительно 105 ед., а общее число бактерий 106-108 ед.

Каких возбудителей выделяет анализ мазка на биоценоз и какие данные получают из анализа?

Результатом проведения исследования мазка на биофлору может стать определение таких микроорганизмов, как:

  • Лактобактерии — основные представители нормального биоценоза;
  • Условно-патогенные микроорганизмы: энтерококки, стрептококки, энтеробактерии, гемофилы, коринебактерии, грамотрицательные палочки, стафилококки, грибы рода кандида.

Проводя анализ мазка на биофлору, врач получает информацию:

  • О росте патогенной микрофлоры либо ее отсутствии.
  • О численности грибов, бактерий и лактобацилл;
  • О степени чувствительности микроорганизмов к антибиотикам (при количестве >104 кое/тамп.).

Исследование на чувствительность микрофлоры к антибиотикам не проводится при росте и сопутствующей и условно-патогенной флоры в низком титре.

Бактериологическое исследование на анаэробные бактерии и чувствительность к антибиотикам

Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции. Принципы забора материала на исследование. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам. Выделение чистой культуры анаэробной бактерии. Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам.

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http: //www. allbest. ru/

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Кемеровская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Бактериологическое исследование на анаэробные бактерии и чувствительность к антибиотикам

студент 2 курса

Науменко Николай Петрович

1. Бактериологическое исследование

1.1 Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции

1.2 Принципы забора материала на исследование

1.3 Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии

2. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам

2.1 Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам

1. Бактериологическое исследование

  • бактериологический анаэробный инфекция антибиотик

Бактериологическое исследование — совокупность методов, применяемых для обнаружения и установления природы бактерий, выделенных от больных, бактерионосителей или из объектов окружающей среды. Б. и. проводят с диагностической целью при инф. болезнях, а также при обследовании на бактерионосительство и определении сан.-гиг. состояния объектов окружающей среды.

Для бактериологического исследования определяется целью исследования, биологическими свойствами микробов, условиями обитания их в исследуемом объекте, патогенезом заболевания (с учетом места наибольшей концентрации возбудителя и путей его выведения из организма).

Так, при сепсисе или болезни, сопровождающейся бактериемией (напр., прибрюшном тифе), для обнаружения возбудителя берут кровь, при дизентерии — испражнения, при пневмонии — мокроту, при подозрении на анаэробную инфекцию — материал из глубоких слоев тканей и т. д. Успех бактериологического исследования в значительной степени зависит от правильности взятия материала и соблюдения определенной осторожности при его транспортировке. У больного материал для исследования рекомендуется брать до начала лечения химиотерапевтическими препаратами!

1.1 Бактериологическая диагностика анаэробной инфекции

Анаэробные микроорганизмы, являясь представителями нормальной микрофлоры, в то же время они имеют потенциальные способности для развития инфекционного процесса практически в любом органе. Вследствие разных причин, например, при длительной терапии иммунодепрессантами, антибиотиками, а также в результате травмы, хирургического вмешательства, эти микроорганизмы попадают в кровяное русло, брюшную полость, различные органы и ткани и становятся причиной тяжелых гнойно-воспалительных процессов, сопровождающихся высокой смертностью, особенно при анаэробном сепсисе.

Важную роль анаэробы играют при развитии осложнений после хирургических вмешательств. В амбулаторной практике анаэробные инфекции с большой частотой встречаются у стоматологических, гинекологических больных, у женщин с отягощенным акушерским анамнезом.

Анаэробы являются участниками гнойно- воспалительных процессов, возникающих во всех отделах генитального тракта женщин. Их выделяют как единственного возбудителя или в составе ассоциации с аэробами при таких распространенных заболеваниях, как вагинит, вагиноз, послеродовый эндометрит. Установлена этиологическая роль анаэробов при возникновении воспалительных заболеваний придатков матки и околоматочного пространства, которые часто являются следствием абортов, инструментальных диагностических мероприятий, применения внутриматочных спиралей, хирургических вмешательств. Анаэробы также играют важную роль при возникновении пародонтоза — воспалительного процесса в тканях, прилегающих к зубам. По данным ВОЗ, около 95% взрослого населения планеты и 80% детей имеют признаки пародонтоза. Воспалительный процесс в тканях десны изначально возникает из-за массивных микробных скоплений и выделяемых ими ферментов и токсинов.

Бактериологическая диагностика при подозрении на анаэробную инфекцию весьма актуальна поскольку позволяет назначить наиболее эффективное лечение.

1.2 Принципы забора материала на исследование

Материал для исследования следует брать по возможности до начала химиотерапии и лучше во время вскрытия или дренирования гнойного очага.

Особенно актуально проведение бактериологического анализа при неэффективности антимикробной терапии и при неблагоприятном течении заболевания и возникновении осложнений.

Отбор проб клинического материала при подозрении на анаэробную инфекцию и транспортировка этих образцов в бактериологическую лабораторию имеет ряд трудностей, связанных с необходимостью избежать агрессивного действия кислорода воздуха на строгие анаэробы.

Так как анаэробы являются представителями нормальной микрофлоры человека, материал для исследования следует брать с соблюдением правил асептики и строго с места локализации очага, чтобы исключить загрязнение посторонней микрофлорой.

Оптимальным способом получения проб материала является его аспирация с помощью шприца. Материал, забранный в шприц, должен быть доставлен в лабораторию для исследования в максимально короткий срок. Транспортные среды позволяют сохранить жизнеспособность анаэробных бактерий в течение достаточно продолжительного срока, указанного в инструкции.

Исследование клинического материала на анаэробы включает в себя все этапы культурального исследования, принятого в бактериологии, в том числе: выделение анаэробных микроорганизмов на искусственных питательных средах, изучение их свойств и идентификацию. Однако, учитывая физиологические особенности этой обширной группы микроорганизмов и их высокие питательные потребности, культивирование этих микробных патогенов представляется сложным и недоступным для большинства бактериологических лабораторий.

В лабораториях клинической микробиологии проводятся исследования на анаэробную инфекцию с использованием специального оборудования , импортных питательных сред и тест-систем для идентификации изучаемых микроорганизмов до рода и вида.

1.3 Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии

Выращивание чистой культуры анаэробов производят путем посева материала из изолированной колонии на среду Китта-Тароцци, в составе мясной бульон, глюкоза и кусочки печени или фарша. Для предотвращения доступа кислорода среда покрыта слоем вазелинового масла.

Метод Цейсслера-исследуемый материал рассевают штрихами по поверхности плотной питательной среды, помещают в анаэростат и выдерживают в термостате при 37°С в течение 24-72 часов.

Метод Вейнберга- несколько капель исследуемого материала вносят в пробирку с 4-5 мл изотонического раствора хлористого натрия, перемешивают запаянным капилляром и переносят в пробирку с расплавленным и охлажденным до 45-50°С сахарным агаром, разлитым высоким столбиком. После перемешивания этим же капилляром последовательно засевают еще две пробирки с сахарным агаром и быстро охлаждают. Пробирки инкубируют в обычном термостате. Метод Виньяля-Вейона.

2. Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам

Чувствительность микроорганизмов к антибиотикам и химиопрепаратам — это свойство микроорганизмов реагировать на действие данных препаратов приостановкой размножения или гибелью. Каждый вид или близкая группа видов имеют характерный спектр и уровень природной чувствительности по отношению к определенному препарату или группе препаратов.

Для чего нужна чувствительность к антибиотикам?

Для успешного проведения лечения антибиотиками, особенно в случаях хронической инфекции, необходимо предварительно определить степень чувствительности к антибиотикам микробов, вызвавших заболевание.

Мерой чувствительности микробов является минимальная концентрация препарата (мкг/мл), которая подавляет рост микробов на питательных средах в стандартных условиях постановки опыта. Выделяют 3 категории чувствительности-устойчивости микробов:

а) чувствительные подавляются при назначении обычных доз антибиотиков;

б) умеренно-устойчивые штаммы микробов подавляются при введении максимальных доз препарата;

в) устойчивые штаммы микробов не подавляются при введении в организм человека максимально допустимых доз.

2.1 Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам

Современные стандартизованные методы определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам подразделяют на две группы:

1. Диффузные методы:

2. Методы серийных разведений антибиотика в питательной среде:

-разведение препарата в жидкой питательной среде;

-разведение препарата в плотной питательной среде.

Несомненным достоинством диффузионных методов является простота тестирования и доступность выполнения в любой бактериологической лаборатории. Однако с учетом высокой стоимости Е-тестов для рутинной работы обычно используют диско-диффузионный метод.

Диффузные методы определения чувствительности основаны на диффузии антибактериальных препаратов из носителя в плотную питательную среду. Стандартизованную суспензию исследуемого микроорганизма, соответствующую стандарту мутности 0,5 по MсFarland, засевают «газоном» на питательную среду. На поверхность посева укладывают стандартные бумажные диски, пропитанные антибиотиками, концентрации которых соответствуют требованиям ВОЗ. Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста микроорганизмов вокруг дисков. После инкубирования посева в термостате оценивают чувствительность микроорганизма (рис. 5). Если исследуемый микроорганизм чувствителен к одному из препаратов, вокруг соответствующего диска образуется зона задержки роста, где концентрация антибиотика превосходит минимальную подавляющую концентрацию (МПК). Устойчивые к препарату культуры не образуют стерильных зон. Однако диффузный метод позволяет лишь косвенно судить о величине МПК, а результатом исследования является отнесение микроорганизма к одной из категорий чувствительности (устойчивый, малоустойчивый, чувствительный, высокочувствительный штамм).

Это модификация диско-диффузного метода, однако, пользуясь этим методом, можно определить МПК. Для реализации этого метода используют полоску Е-теста, содержащую градиент концентраций антибиотика от максимальной к минимальной. Полоски помещают на поверхность засеянной питательной среды. Если бактерии чувствительны к действию препарата, вокруг участков полоски, содержащих его ингибирующие концентрации, образуется эллипсовидная зона задержки роста, в месте пересечения которой с полоской Е-теста получают значение МПК.

Методы серийных разведений

Основаны на прямом определении основного количественного показателя, характеризующего микробиологическую активность антибактериальных препаратов — величины его МПК. МПК — минимальная концентрация, подавляющая видимый рост исследуемого микроорганизма в бульонной культуре или на плотной питательной среде.

Метод серийных разведений в жидкой питательной среде

Антибиотик в различных концентрациях вносят в жидкую питательную среду (бульон). Затем бактериальную суспензию определенной плотности, соответствующую стандарту мутности 0,5 по MсFarland, помещают в бульон с антибиотиком. После инкубации при температуре 37 С проводят учет полученных результатов. Наличие роста микроорганизма в бульоне (помутнение бульона) свидетельствует о том, что данная концентрация антибиотика недостаточна, чтобы подавить его жизнеспособность. По мере увеличения концентрации антибиотика рост микроорганизма ухудшается. Первую наименьшую концентрацию антибиотика (из серии последовательных разведений), где визуально не определяется бактериальный рост принято считать минимальной концентрацией, подавляющая видимый рост исследуемого микроорганизма. Измеряется МПК в мг/л или мкг/мл (рис. 6). МПК — наименьшая концентрация антибиотика (мг/л или мкг/мл), которая in vitro полностью подавляет видимый рост бактерий

Метод серийных разведений в плотной питательной среде

Этот метод аналогичен методу серийных разведений в жидкой питательной среде, однако определение МПК требует более сложных манипуляций. Готовят двойные серийные разведения препарата от 1:10000 до 1:320000, затем вносят по 1 мл каждого разведения в пробирки, содержащие расплавленный и остуженный до 45 С агар. Затем содержимое пробирок быстро выливают в стерильные чашки Петри и после застывания питательной среды засевают исследуемый микроорганизм. После инкубации определяют МПК по отсутствию роста на чашках, содержащих наименьшие концентрации препарата.

1. Методичка по антибиотикам авторы : Нечаева О.В., Швиденко И.Г., Шуб Г.М.. Информация взята со страниц 59-65

2. Медицинская микробиология ,вирусология и иммунология — под редакцией академика РАММ А.А. Воробьева — Взята информация (Метод выделения чистой культуры анаэробной бактерии)

Что это такое анаэробные бактерии и анаэробные инфекции

Бактерии присутствуют в нашем мире повсеместно. Они везде и всюду, и количество их разновидностей просто поражает.

В зависимости от необходимости наличия кислорода в питательной среде для осуществления жизнедеятельности микроорганизмы классифицируют на следующие виды.

  • Облигатные аэробные бактерии, которые собираются в верхней части питательной среды, в составе флоры был максимальный объем кислорода.
  • Облигатные анаэробные бактерии, которые находятся в нижней части среды, максимально далеко от кислорода.
  • Факультативные бактерии в основном обитают в верхней части, но могут быть распределены по всей среде, так как не зависят от кислорода.
  • Микроаэрофилы предпочитают небольшую концентрацию кислорода, хотя и собираются в верхней части среды.
  • Аэротолерантные анаэробы равномерно распределяются в питательной среде, нечувствительны к наличию или отсутствию кислорода.

Понятие анаэробных бактерий и их классификации

Термин «анаэробы» появился в 1861 году, благодаря работам Луи Пастера.

Анаэробные бактерии – это микроорганизмы, которые развиваются вне зависимости от присутствия в питательной среде кислорода. Они получают энергию путем субстратного фосфорилирования. Различают факультативные и облигатные аэробы, а также другие виды.

Факультативные бактерии могут существовать в любой среде. Причиной этого является то, что они могут менять один метаболический путь на другой. К ним причисляются кишечная палочка, стафилококки, шигеллы и другие.

  • Облигатные бактерии погибают, если в питательной среде присутствует свободный кислород. Их, в свою очередь, классифицируют на:
    • клостридии – облигатные аэробные бактерии, образующие споры. К ним относятся возбудители столбняка и ботулизма.
    • неклостридиальные анаэробы. Этот вид является составляющей микрофлоры живых организмов. Значительную роль эти анаэробы играют во время развития различных гнойно-воспалительных заболеваний. В основном неспорообразующие бактерии обитают в ротовой полости, в желудочно-кишечном тракте, на коже и в женских половых путях.
  • Капнеистические анаэробы. Этому виду необходима повышенная концентрация уклекислоты.
  • Аэротолерантные бактерии. Такой вид не обладает различными типами дыхания, но при этом не гибнет, если в питательной среде присутствует молекулярный кислород.
  • Умеренно-строгие анаэробы. Этот вид, как и капнеистические бактерии, не гибнет в среде с кислородом, но при этом не размножается. Для размножения ему необходима среда с низким парциальным давлением кислорода.
  • Наиболее значимые анаэробы — бактероиды

    Наиболее значимыми аэробами являются бактероиды. Примерно пятьдесят процентов всех гнойно-воспалительных процессов, возбудителями которых могут быть анаэробные бактерии, приходится на бактероиды.

    Бактероиды – это род граммотрицательных облигатных анаэробных бактерий. Это палочки с биполярной окрашиваемостью, размер которых не превышает 0,5-1,5 на 15 мкм. Вырабатывают токсины и ферменты, которые могут вызывать вирулентность. Различные бактероиды обладают разной устойчивостью к антибиотикам: встречаются как устойчивые, так и чувствительные к антибиотикам.

    Вырабатывание энергии в тканях человека

    Некоторые ткани живых организмов обладают повышенной устойчивостью к пониженному содержанию кислорода. В стандартных условиях синтез аденозинтрифосфата идет аэробным путем, но при повышенных физических нагрузках и при воспалительных реакциях на первый план выходит анаэробный механизм.

    Аденозинтрифосфат (АТФ) – это кислота, играющая важную роль при вырабатывании организмом энергии. Существует несколько вариантов синтеза этого вещества: один аэробный и целых три анаэробных.

    К анаэробным механизмам синтеза АТФ относятся:

    • перефосфорилирование между креатинфосфатом и АДФ;
    • реакция трансфосфорилирования двух молекул АДФ;
    • анаэробное расщепление глюкозы крови или запаса гликогена.

    Культивирование анаэробных организмов

    Одной из задач микробиологии является культивирование анаэробных бактерий. Для выращивания многоклеточных анаэробных организмов требуется специальная микрофлора, а также определенные концентрации метаболитов. Применяется культивирование при различных исследованиях, например, при исследованиях паразитов, живущих в человеческом организме.

    Существуют специальные методы для выращивания анаэробов. Они заключаются в замене воздуха на газовые смеси в герметизированных термостатах.

    Другим способом будет выращивание микроорганизмов в питательной среде, в которую добавляют редуцирующие вещества.

    Питательные среды для анаэробных организмов

    Существуют общие питательные среды и дифференциально-диагностические питательные среды. К общим относят среду Вильсона-Блера и среду Китта-Тароцци. К дифференциально-диагностическим – среды Гисса, среду Ресселя, среду Эндо, среду Плоскирева и висмут-сульфитный агар.

    Базой для среды Вильсона-Блера является агар-агар с добавлением глюкозы, сульфита натрия и двухлористого железа. Черные колонии анаэробов образуются в основном в глубине агарового столбика.

    Среда Ресселя (Рассела) используется в изучении биохимических свойств таких бактерий, как шигеллы и сальмонеллы. Она также содержит агар-агар и глюкозу.

    Среда Плоскирева подавляет рост многих микроорганизмов, поэтому ее используют в дифференциально-диагностических целях. В такой среде хорошо развиваются возбудители брюшного тифа, дизентерии и другие патогенные бактерии.

    Основное назначение висмут-сульфитного агара – выделение сальмонелл в чистом виде. Данная среда основывается на способности сальмонелл производить сероводород. Данная среда схожа со средой Вильсона-Блера по применяемой методике.

    Анаэробные инфекции

    Большинство анаэробных бактерий, живущих в организме человека или животных, могут вызывать различные инфекции. Как правило, заражение происходит в период ослабления иммунитета или нарушения общей микрофлоры организма. Также существует вероятность попадания возбудителей инфекций из внешней среды, особенно поздней осенью и зимой.

    Инфекции, вызванные анаэробными бактериями, как правило, связаны с флорой слизистых оболочек человека, то есть с основными местами обитания анаэробов. Как правило, у таких инфекций сразу несколько возбудителей (до 10).

    Точное число заболеваний, вызванных анаэробами, практически невозможно определить в связи с затрудненным сбором материалов для анализа, транспортировкой образцов и культивированием самих бактерий. Чаще всего этот тип бактерий обнаруживают при хронических заболеваниях.

    Анаэробным инфекциям подвержены люди любого возраста. При этом у детей уровень инфекционных заболеваний выше.

    Анаэробные бактерии могут вызывать различные внутричерепные заболевания (менингит, абсцессы и другие). Распространение, как правило, происходит с током крови. При хронических заболеваниях анаэробы способны вызывать патологии в области головы и шеи: отит, лимфадениты, абсцессы. Несут опасность эти бактерии и желудочно-кишечному тракту, и легким. При различных заболеваниях мочеполовой женской системы также существует риск развития анаэробных инфекций. Различные заболевания суставов и кожи могут быть следствием развития анаэробных бактерий.

    Причины появления анаэробных инфекций и их признаки

    К возникновению инфекций приводят все процессы, во время которых на ткани попадают активные анаэробные бактерии. Также развитие инфекций могут вызвать нарушенное кровоснабжение и некроз тканей (различные травмы, опухоли, отеки, болезни сосудов). Инфекции ротовой полости, укусы животных, легочные заболевания, воспалительные заболевания тазовых органов и многие другие заболевания также могут быть вызваны именно анаэробами.

    В разных организмах инфекция развивается по-разному. На это влияет и вид возбудителя, и состояние здоровья человека. Из-за трудностей, связанных с диагностированием анаэробных инфекций, заключение часто основывается на предположениях. Отличаются некоторыми особенностями инфекции, вызванные неклостридиальными анаэробами.

    Первыми признаками заражения тканей аэробами являются нагноения, тромбофлебиты, газообразование. Некоторые опухоли и новообразования (кишечные, маточные и другие) также сопровождаются развитием анаэробных микроорганизмов. При анаэробных инфекциях может появляться неприятный запах, однако, его отсутствие не исключает анаэробов в качестве возбудителя инфекции.

    Особенности получения и транспортировки образцов

    Самым первым исследованием в определении инфекций, вызванных анаэробами, является визуальный осмотр. Различные кожные поражения являются частым осложнением. Также свидетельством жизнедеятельности бактерий будет наличие газа в зараженных тканях.

    Для лабораторных исследований и установления точного диагноза, прежде всего, надо грамотно получить образец материи из пораженного участка. Для этого используют специальную технику, благодаря которой нормальная флора не попадает в образцы. Наилучший метод – это аспирация прямой иглой. Получение лабораторного материала методом мазков не рекомендуется, но возможно.

    К числу проб, непригодных для проведения дальнейшего анализа, относятся:

    • мокроты, полученные путем самовыделения;
    • пробы, которые получены при бронхоскопии;
    • мазки из влагалищных сводов;
    • моча при свободном мочеиспускании;
    • фекалии.

    Для исследования могут быть использованы:

    • кровь;
    • плевральная жидкость;
    • транстрахеальные аспираты;
    • гной, полученный из полости абсцесса;
    • спинно-мозговая жидкость;
    • пунктаты легких.

    Транспортировать образцы необходимо максимально быстро в специальном контейнере или пластмассовой сумке с анаэробными условиями, так как даже кратковременное взаимодействие с кислородом может вызвать гибель бактерий. Жидкие образцы перевозят в пробирке или в шприцах. Тампоны с образцами транспортируют в пробирках с углекислым газом или заранее подготовленными средами.

    Лечение анаэробной инфекции

    В случае диагностирования анаэробной инфекции для адекватного лечения необходимо следовать следующим принципам:

    • токсины, вырабатываемые анаэробами, надо нейтрализовать;
    • среду обитания бактерий следует изменить;
    • распространение анаэробов нужно локализовать.

    Для соблюдения этих принципов в лечении используют антибиотики, которые воздействуют как на анаэробов, так и на аэробные организмы, так как часто флора при анаэробных инфекциях носит смешанный характер. При этом, назначения лекарственные препараты, врач должен оценить качественный и количественный состав микрофлоры. К средствам, которые активны против анаэробных возбудителей относят: пенициллины, цефалоспорины, хлопамфеникол, фторхиноло, метранидазол, карбапенемы и другие. Некоторые препараты имеют ограниченное действие.

    Для контроля среды обитания бактерий в большинстве случаев используют хирургическое вмешательство, которые выражается в обработке пораженных тканей, дренировании абсцессов, обеспечении нормальной циркуляции крови. Игнорировать хирургические методы не стоит из-за риска развития опасных для жизни осложнений.

    Иногда используют вспомогательные методы лечения, а также из-за трудностей, связанных с точным определением возбудителя инфекции, применяют эмпирическое лечение.

    При развитии анаэробных инфекций в ротовой полости также рекомендуется добавить в рацион как можно больше свежих фруктов и овощей. Наиболее полезны при этом яблоки и апельсины. Ограничению подвергают мясную пищу и фастфуд.

    Читать еще:  Lp7510 описание на русском
    Ссылка на основную публикацию
    Adblock
    detector